1　基因芯片概述

　　隨著人類基因組計(jì)劃( Human Genome Project)即全部核苷酸測序的即將完成
，人類基因組研究的重心逐漸進(jìn)入后基因組時(shí)代（ Postgenome Era）向基因的功
能及基因的多樣性傾斜［1，2］。通過對個(gè)體在不同生長發(fā)育階段或不同生理狀態(tài)
下大量基因表達(dá)的平行分析，研究相應(yīng)基因在生物體內(nèi)的功能，闡明不同層次多基
因協(xié)同作用的機(jī)理，進(jìn)而在人類重大疾病如癌癥、心血管疾病的發(fā)病機(jī)理、診斷治
療、藥物開發(fā)等方面的研究發(fā)揮巨大的作用。它將大大推動人類結(jié)構(gòu)基因組及功能
基因組的各項(xiàng)基因組研究計(jì)劃。
　　基因芯片的工作原理與經(jīng)典的核酸分子雜交方法（southern 、northern）是
一致的，都是應(yīng)用已知核酸序列作為探針與互補(bǔ)的靶核苷酸序列雜交，通過隨后的
信號檢測進(jìn)行定性與定量分析，基因芯片在一微小的基片（硅片、玻片、塑料片等
）表面集成了大量的分子識別探針，能夠在同一時(shí)間內(nèi)平行分析大量的基因，進(jìn)行
大信息量的篩選與檢測分析［3，4］。基因芯片主要技術(shù)流程包括：芯片的設(shè)計(jì)與
制備；靶基因的標(biāo)記；芯片雜交與雜交信號檢測。
　　基因芯片的設(shè)計(jì)實(shí)際上是指芯片上核酸探針序列的選擇以及排布，設(shè)計(jì)方法取
決于其應(yīng)用目的，目前的應(yīng)用范圍主要包括基因表達(dá)和轉(zhuǎn)錄圖譜分析及靶序列中單
堿基多態(tài)位點(diǎn)（single nucleotide polymorphism，SNP）或突變點(diǎn)的檢測，表達(dá)
型芯片的目的是在雜交實(shí)驗(yàn)中對多個(gè)不同狀態(tài)樣品(不同組織或不同發(fā)育階段、不
同藥物刺激)中數(shù)千基因的表達(dá)差異進(jìn)行定量檢測，探針序列一般來自于已知基因
的cDNA 或EST庫，設(shè)計(jì)時(shí)序列的特異性應(yīng)放在首要位置，以保證與待測目的基因的
特異結(jié)合，對于同一目的基因可設(shè)計(jì)多個(gè)序列不相重復(fù)的探針，使最終的數(shù)據(jù)更為
可靠。基因單堿基多態(tài)檢測的芯片一般采用等長移位設(shè)計(jì)法［5］，即按靶序列從
頭到尾依次取一定長度的互補(bǔ)的核苷酸序列形成一探針組合，這組探針是與靶序列
完全匹配的野生型探針，然后對于每一野生型探針，將其中間位置的某一堿基分別
用其它三種堿基替換，形成三種不同的單堿基變化的核苷酸探針，這種設(shè)計(jì)可以對
某一段核酸序列所有可能的SNPs位點(diǎn)進(jìn)行掃描。
　　芯片制備方法主要包括兩種類型：(1)點(diǎn)樣法：首先是探針庫的制備, 根據(jù)基
因芯片的分析目標(biāo)從相關(guān)的基因數(shù)據(jù)庫中選取特異的序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增或直接人工
合成寡核苷酸序列［6］，然后通過計(jì)算機(jī)控制的三坐標(biāo)工作平臺用特殊的針頭和
微噴頭分別把不同的探針溶液逐點(diǎn)分配在玻璃、尼龍以及其它固相基片表面的不同
位點(diǎn)上，通過物理和化學(xué)的方法使之固定，該方法各技術(shù)環(huán)節(jié)均較成熟，且靈活性
大，適合于研究單位根據(jù)需要自行制備點(diǎn)陣規(guī)模適中的基因芯片。(2)原位合成法
［7～10］：該法是在玻璃等硬質(zhì)表面上直接合成寡核苷酸探針陣列，目前應(yīng)用的
主要有光去保護(hù)并行合成法，壓電打印合成法等，其關(guān)鍵是高空間分辨率的模板定
位技術(shù)和高合成產(chǎn)率的DNA化學(xué)合成技術(shù)，適合制作大規(guī)模DNA探針芯片，實(shí)現(xiàn)高密
度芯片的標(biāo)準(zhǔn)化和規(guī)�；�生產(chǎn)。
　　待分析樣品的制備是基因芯片實(shí)驗(yàn)流程的一個(gè)重要環(huán)節(jié), 靶基因在與芯片探針
結(jié)合雜交之前必需進(jìn)行分離、擴(kuò)增及標(biāo)記。標(biāo)記方法根據(jù)樣品來源、芯片類型和研
究目的的不同而有所差異。通常是在待測樣品的PCR擴(kuò)增、逆轉(zhuǎn)錄或體外轉(zhuǎn)錄過程
中實(shí)現(xiàn)對靶基因的標(biāo)記。對于檢測細(xì)胞內(nèi)mRNA表達(dá)水平的芯片，一般需要從細(xì)胞和
組織中提取RNA，進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄，并加入偶聯(lián)有標(biāo)記物的dNTP，從而完成對靶基因的
標(biāo)記過程［11］，對于陣列密度較小的芯片可以用同位素，所需儀器均為實(shí)驗(yàn)室常
規(guī)使用設(shè)備，易于開展相關(guān)工作，但是在信號檢測時(shí)，一些雜交信號強(qiáng)的點(diǎn)陣容易
產(chǎn)生光暈，干擾周圍信號的分析。高密度芯片的分析一般采用熒光素標(biāo)記靶基因，
通過適當(dāng)內(nèi)參的設(shè)置及對熒光信號強(qiáng)度的標(biāo)化可對細(xì)胞內(nèi)mRNA的表達(dá)進(jìn)行定量檢測
。近年來運(yùn)用的多色熒光標(biāo)記技術(shù)可更直觀地比較不同來源樣品的基因表達(dá)差異，
即把不同來源的靶基因用不同激發(fā)波長的熒光素標(biāo)記，并使它們同時(shí)與基因芯片雜
交，通過比較芯片上不同波長熒光的分布圖獲得不同樣品間差異表達(dá)基因的圖譜［
12，13］，常用的雙色熒光試劑有Cy3- dNTP和Cy5- dNTP。對多態(tài)性和突變檢測型
基因芯片采用多色熒光技術(shù)可以大大提高芯片的準(zhǔn)確性和檢測范圍，例如用不同的
熒光素分別標(biāo)記靶序列及單堿基失配的參考序列，使它們同時(shí)與芯片雜交，通過不
同熒光強(qiáng)弱的比較得出靶序列中堿基失配的信息［14］。
　　基因芯片與靶基因的雜交過程與一般的分子雜交過程基本相同，雜交反應(yīng)的條
件要根據(jù)探針的長度、GC堿基含量及芯片的類型來優(yōu)化，如用于基因表達(dá)檢測，雜
交的嚴(yán)格性較低，而用于突變檢測的芯片的雜交溫度高，雜交時(shí)間短，條件相對嚴(yán)
格。如果是用同位素標(biāo)記靶基因，其后的信號檢測即是放射自顯影，若用熒光標(biāo)記
，則需要一套熒光掃描及分析系統(tǒng)，對相應(yīng)探針陣列上的熒光強(qiáng)度進(jìn)行分析比較，
從而得到待測樣品的相應(yīng)信息。由于基因芯片獲取的信息量大，對于基因芯片雜交
數(shù)據(jù)的分析、處理、查詢、比較等需要一個(gè)標(biāo)準(zhǔn)的數(shù)據(jù)格式，目前，一個(gè)大型的基
因芯片的數(shù)據(jù)庫正在構(gòu)建中，將各實(shí)驗(yàn)室獲得的基因芯片的結(jié)果集中起來，以利于
數(shù)據(jù)的交流及結(jié)果的評估與分析。

2　基因芯片的應(yīng)用

　　基因表達(dá)圖譜的繪制是目前基因芯片應(yīng)用最廣泛的領(lǐng)域，也是人類基因組工程
的重要組成部分，它提供了從整體上分析細(xì)胞表達(dá)狀況的信息，而且為了解與某些
特殊生命現(xiàn)象相關(guān)的基因表達(dá)提供了有力的工具，對于基因調(diào)控以及基因相互作用
機(jī)理的探討有重要作用［15～19］。人類基因組編碼大約100000個(gè)不同的基因，因
此，具有監(jiān)測大量mRNA的實(shí)驗(yàn)工具很重要。基因芯片技術(shù)可清楚地直接快速地檢測
出以1∶300000水平出現(xiàn)的mRNA，且易于同時(shí)監(jiān)測成千上萬的基因［16］。目前，
已能夠在1.6cm2面積上合成和閱讀含400000個(gè)探針的陣列，可監(jiān)測10000個(gè)基因的
表達(dá)狀況。斯坦福大學(xué)的Brown用制備的酵母cDNA芯片，獲得酵母在不同細(xì)胞周期
狀態(tài)以及在熱休克冷休克處理后其2473個(gè)基因的表達(dá)圖譜［19］，較直觀地反應(yīng)了
不同條件和狀態(tài)下基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控水平，從而為尋找基因調(diào)控的機(jī)理提供了一條有效
的途徑。
　　定量監(jiān)測大量基因表達(dá)水平在闡述基因功能、探索疾病原因及機(jī)理、發(fā)現(xiàn)可能
的診斷及治療的靶基因等方面具有重要價(jià)值的。Derisi等選用來自惡性腫瘤細(xì)胞系
UACC903中的1161個(gè)cDNA克隆制成芯片，通過比較正常和腫瘤細(xì)胞的表達(dá)差異，發(fā)
現(xiàn)在惡性腫瘤細(xì)胞中P21基因處于失活或關(guān)閉狀態(tài)，但在逆轉(zhuǎn)的細(xì)胞系中呈高表達(dá)
［17］。Golub等應(yīng)用cDNA 芯片檢測基因表達(dá)的差異進(jìn)行癌癥的分類，成功地區(qū)分
出急性髓細(xì)胞性白血�。ˋML）和急性淋巴細(xì)胞性白血�。ˋLL），預(yù)期這種方法還
能診斷出新的白血病種類［20］。在炎癥性疾病類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎(RA)和炎癥性腸病
(IBD)的基因表達(dá)研究中，可檢測出炎癥疾病誘導(dǎo)的基因如TNF-α、IL或粒細(xì)胞集
落刺激因子，同時(shí)發(fā)現(xiàn)一些以前未發(fā)現(xiàn)的基因如HME基因和黑色素瘤生長刺激因子
［11，21］。目前，大量涌現(xiàn)的人類ESTs給cDNA微陣列提供了豐富的序列資源，數(shù)
據(jù)庫中ESTs代表了人類基因，因此ESTs微陣列可在缺乏其它序列信息的條件下用于
基因發(fā)現(xiàn)和基因表達(dá)檢測，從而加快人類基因組功能分析的進(jìn)程。
　　基因芯片的另一重要應(yīng)用是基因多態(tài)位點(diǎn)及基因突變的檢測，現(xiàn)有大量實(shí)例說
明，基因組多樣性的研究對闡明不同人群和個(gè)體在疾病的易感性和抵抗性方面表現(xiàn)
出的差異具有重要意義，一旦對基因組的編碼序列進(jìn)行系統(tǒng)篩查，就有可能找出與
疾病易感性有關(guān)的大量基因變異［2］�；�因芯片技術(shù)可大規(guī)模地檢測和分析DNA的
變異及多態(tài)性。Wang等應(yīng)用高密度基因芯片對2.3Mb人類基因的SNP 進(jìn)行篩查，確
定了3241個(gè)SNPs位點(diǎn)，顯示出大規(guī)模鑒定人類基因型的可能［22］。Lipshutz等人
采用含18,495個(gè)寡核苷酸探針的微陣列，對HIV-1基因組反轉(zhuǎn)錄酶基因(rt)及蛋白
酶基因(pro)的高度多態(tài)性進(jìn)行了篩選，這些變異將導(dǎo)致病毒對多種抗病毒藥物包
括AZT、ddI、ddC等表現(xiàn)出抗性，因此rt與pro的變異與多態(tài)性的檢測具有重要的臨
床意義［23］。隨著大量疾病相關(guān)基因的發(fā)現(xiàn)，變異與多態(tài)性分析將在疾病的診斷
與治療方面體現(xiàn)出越來越重要的價(jià)值。Affymetrix公司已將P53 基因的全長序列和
已知突變的序列制成探針集成在芯片上，可對與P53 基因突變相關(guān)的癌癥進(jìn)行早期
診斷。Hacia等采用含96600個(gè)20聚寡核苷酸高密度陣列對遺傳性乳腺和卵巢癌BRC
A1基因3.45kb的第11個(gè)外顯子進(jìn)行雜合變異篩選［12］，結(jié)果準(zhǔn)確診斷出15個(gè)已知
變異的患者樣品中的14個(gè)，而在20個(gè)對照樣品中未發(fā)現(xiàn)1例假陽性，表明DNA芯片技
術(shù)在某些疾病相關(guān)基因可能的雜合變異的檢測方面所具有的靈敏度與特異性是令人
滿意的。
　　芯片技術(shù)中雜交測序技術(shù)（sequencing by hybridization,SBH）是一種新的
高效快速測序方法，也是基因芯片的另一重要應(yīng)用［24］，其原理與芯片檢測多態(tài)
位點(diǎn)相類似，即通過與一組已知序列的核酸探針雜交進(jìn)行序列測定，用熒光標(biāo)記的
待測序列與基因芯片上對應(yīng)位置的核酸探針產(chǎn)生互補(bǔ)配對時(shí)，通過確定熒光強(qiáng)度最
強(qiáng)的探針位置，獲得一組序列互補(bǔ)的探針序列，據(jù)此可重組出靶核酸的序列。用含
65536個(gè)8聚寡核苷酸的微陣列，采用SBH技術(shù)，可測定200bp長DNA序列，采用6710
8864個(gè)13聚寡核苷酸的微陣列，可對數(shù)千個(gè)堿基長的DNA測序。

3　結(jié)束語

　　基因芯片技術(shù)的出現(xiàn)不過短短幾年時(shí)間，其發(fā)展勢頭十分迅猛，在生命科學(xué)的
各個(gè)領(lǐng)域得到廣泛地應(yīng)用，但其存在的缺陷也是相當(dāng)明顯的。首先是成本的問題，
由于芯片制作的工藝復(fù)雜，信號檢測也需專門的儀器設(shè)備，一般實(shí)驗(yàn)室難以承擔(dān)其
高昂的費(fèi)用，其次在芯片實(shí)驗(yàn)技術(shù)上還有多個(gè)環(huán)節(jié)尚待提高，如在探針合成方面，
如何進(jìn)一步提高合成效率及芯片的集成程度是研究的焦點(diǎn)。而樣品制備的簡單化與
標(biāo)準(zhǔn)化則芯片應(yīng)用進(jìn)一步普及的前提。雖然芯片技術(shù)還存在這樣或那樣的問題，但
其在基因表達(dá)譜分析、基因診斷、藥物篩選及序列分析等諸多領(lǐng)域已呈現(xiàn)出廣闊的
應(yīng)用前景，隨著研究的不斷深入和技術(shù)的更加完善基因芯片一定會在生命科學(xué)研究
領(lǐng)域發(fā)揮越來越重要的作用。

［參考文獻(xiàn)］

［1］　Cheung V G,Morley M,Aguilar F et al.Making and reading microarra
ys［J］.Nature Genetics(Supplement),1999，21∶15.
［2］　張思仲.人類基因組的單核苷酸多態(tài)性及其醫(yī)學(xué)應(yīng)用［J］.中華醫(yī)學(xué)遺傳學(xué)
雜志，1999，16∶119.
［3］　Marshall A and Hodgson J. DNA chips: An array of possibilities［
J］.Nature Biotechnology，1998，16∶731 .
［4］　Ramsay R. DNA chips: State-of-the-art［J］.Nature Biotechnology，
1998，16∶40.
［5］　Lipshutz R, Fodor S ,Gingeras T,et al. High density synthetic ol
igonucleotide arrays［J］.Nature Genetics(Supplement)，1999，21∶20.
［6］　Prpndnikov D, Timofeev E, Mirzabekov A.Immobilization of DNA in 
Polyacrylamide gel for the manufracture of DNA chip and oligonucleotide
Microchips［J］，Anal Biochem，1998，259∶34.
［7］　McGall GH，Barone AD，Diggelmann M，et al. The efficiency of lig
ht- directed synthesis of DNA arrays on glass substrates［J］.J Am Chem
 Soc，1997，119(22)∶5081.
［8］　Pease AC, Solas D, Sullivan EJ, et al. Light-generated oligonucl
eotide arrays for rapid DNA sequence analysis［J］.Proc Natl Acad Sci U
SA, 1994，91∶5022.
［9］　Fodor S，Read L, Pirrung M et al.Light-directed,spatially addres
sable parallel chemical synthesis［J］.Science,1991，251∶767.
［10］　Beecher，Jody E.，McGall，Glenn H.，et al. Chemically amplified
 photolithography for the fabrication of high density oligonucleotide a
ssays［J］.Polym Mater Sci Eng，1997，76∶597.
［11］　Schena，M，Shalon，D，Davis，RW，et al. Qantitative monitoring 
of gene expression patterns with a complementary DNA microarray［J］.Sc
ience,1995, 270∶467.
［12］　Hacia J,Brody L,Chee M, et al.Detection of heterozygous mutatio
ns in BRCA1 using high density oligonucleotide arrays and two-color flu
orescence Analysis［J］.Nat Genet,1996, 14∶441.
［13］　Hacia J ，Edgemon K,Sun B et al.Two color hybridization analysi
s using high density oligonucleotide arrays and energy transfer dyes［J
］.Nucleic Acids Res,1998, 26∶4249.
［14］　Hacia J.Resequencing and mutation analysis using oligonucleotid
es microarrays ［J］.Nature Genetics(Supplement),1999,21∶42.
［15］　Wodicka L，Dong H，Mittmann M,et al.Genome-wide expression moni
toring in Saccharomyces cerevisiae［J］.Nature Biotechnology,1997,15∶1
359.
［16］　Lockhart DJ，Dong H，Byrne MC，et al. Expression monitoring by 
hybridization to high-density oligonucleotide arrays［J］.Nature Biotec
hnology ,1997,14∶1675.
［17］　DeRisi J，Penland L，Brown PO，et al. Use of a cDNA microarray 
to analysis gene expression patterns in human cancer［J］.Nat Genet,199
6,14∶457.
［18］　Brown P O, Botstein D.Exploring the new world of genome with DN
A microarrays［J］.Nature Genetics(Supplement),1999,21∶33.
［19］　Jelinsky S and Samson L.Global response of Saccharomyces cerevi
siae to a alkylating agent ,proc［J］.Natl Acad Sci USA,1999，96∶1486.
［20］　Golub T, Slonim D, Tamayo P, et al, 1999, Molecular Classificat
ion of cancer: Class Discovery and Prediction by Gene Expression Monito
ring［J］.Science,1999,286∶531.
［21］　Heller RA, Schena M, Chai A, et al.Discovery and analysis of in
flammatory disease-related genes using cDNA microarrays［J］.Proc Natl 
Acad Sci USA,1997,94∶2150.
［22］　Wang D, Fan J, Siao C et al.Large-scale identification, mapping
 and genotyping of single-nucleotide polymorphism in human genome［J］.
Science,1998,280∶1077.
［23］　Lipshutz RJ, Morris D, Chee M, et al. Using oligonucleotide pro
be arrays to access genetic diversity［J］.Bio Feature,1995,19(3)∶442.
［24］　Wallraff G，Labadie J，Brock P，et al. DNA Sequencing on a Chip
［J］.Chemtech,1997,22∶32.